Instituto de seguridad y servicios sociales de los trabajadores del estado


Estudios entomológicos de anofelinos



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9.14.2 Estudios entomológicos de anofelinos.
Para el caso de los anofelinos vectores del paludismo, se parte hecho de que el género comprende especies silvestres consideradas como vectores eficientes, primarios y secundarios, y otras de las cuales no se ha documentado que estén involucradas como transmisoras de plasmodios, debido a su biología, distribución, abundancia, antropofilia y por la variación en los factores y elementos del clima que se presentan en la extensión territorial del país.

En las áreas endémicas deben efectuarse estudios entomológicos, para conocer la distribución de las especies, estimar las densidades poblacionales, fluctuaciones estacionales y anuales, tanto de formas inmaduras como de adultos, sus hábitos de alimentación y reposo, grado de endofagia, endofilia y horarios escalonados de mayor actividad hematófaga, ubicación de refugios naturales, cuerpos de agua positivos al vector, sitios específicos en que se crían y edad fisiológica. Entre otras actividades se considera la evaluación de la efectividad de las medidas que se ponen en práctica, como son la susceptibilidad y resistencia a los insecticidas, residualidad, dosis indicadas y especificaciones técnicas a cumplir.

Con base en lo anterior, se debe efectuar sistemáticamente la captura de mosquitos adultos, de acuerdo con las siguientes modalidades:

a) Captura nocturna peridomiciliaria, con cebo humano

b) Capturas nocturnas de anofelinos reposando fuera de las casas:

- en la vegetación del peridomicilio

- en albergues de animales

b) Capturas diurnas de anofelinos:

- en casas rociadas

- en casas no rociadas

- en refugios naturales

Estas actividades deben incluir además de especificación de la localidad y fecha en que se realizan, datos del tiempo, como temperaturas, humedad relativa porcentual, dirección e intensidad del viento, y presencia de lluvia, entre otros que influyen directamente en la actividad de los anofelinos, además de concentrar la información por especie y alguna otra información detallada, como los horarios escalonados de actividad hematófaga.

Otros estudios a realizar:

· Reconocimiento hidroentomológico

- registro del estudio de criaderos

- registro de captura de anofelinos en estadios larvales

- ubicación de refugios naturales

- levantamiento o actualización de croquis

· Pruebas de resistencia y susceptibilidad a los insecticidas

- de mosquitos adultos

- de larvas

· Disección de ovarios, para determinar edad fisiológica.

· Ensayos de evaluación de máquinas, equipos e insecticidas

- pruebas biológicas de pared

- medición de gotas de aerosol

- pruebas de efectividad de penetración de la niebla

En la misma forma que en la captura de mosquitos adultos, los anteriores estudios requieren información específica, además de que son aplicables a todos los culícidos que incluyen a los mosquitos aedinos.

Los indicadores entomológicos empleados son:



a) Promedio de picadura hombre hora = Total de anofelinos capturados (por especie)

Total de horas empleadas en la captura

b) Promedio de anofelinos por casa positiva = Total de anofelinos capturados

Número de casas positivas

c) Porcentaje de refugios positivos = Número de refugios positivos X 100

Número de refugios revisados

d) Promedio de larvas por caladas = Total de larvas contabilizadas

Total de caladas efectuadas

e) Mortalidad en las pruebas de susceptibilidad = Total de mosquitos muertos X 100

Total de mosquitos expuestos

f) Mortalidad corregida = % mortalidad de mosq. exp. - % mortalidad test. X 100

100 - % de mortalidad de los mosquitos testigos

g) Porcentaje hembras multíparas = No. de hembras de mosquito multíparas X 100

No. de hembras de mosquito disecadas

9.14.3 Estudios entomológicos del dengue

En el caso de los vectores del dengue, el grado de infestación por Aedes aegypti o Aedes albopictus, se conoce mediante la captura de imagos o de formas larvarias en los criaderos, y se utilizan los siguientes indicadores:

a) Indice larvario de casas casas con criaderos X 100

casas exploradas

b) Indice larvario de recipientes positivos recipientes X 100

recipientes con agua explorados

c) Indice larvario de Breteau depósitos X 100

casas inspeccionadas

d) Indice de picadura mosquitos .

horas/hombre de

e) Indice de pupas depósitos positivos depósitos positivos a pupas X 100

depósitos positivos

El dengue es una enfermedad facilitada por el hombre; sólo se previene o controla mediante acciones sobre sus vectores, por lo que la entomología juega un papel definitivo. Los transmisores del dengue se reproducen, reposan y se alimentan en los domicilios de las poblaciones y se crían en recipientes generalmente artificiales, que contienen agua.

Las mediciones de los Aedes no sólo incluyen índices tradicionales, sino que deben considerar
la importancia de la estacionalidad de la infestación, recipientes en que se establecen los criaderos,
así como la tipología de los mismos. De esa manera, se dispondrá de información suficiente para diseñar
las estrategias de control más adecuadas.


Los recipientes donde se reproducen los Aedes, serán criaderos permanentes cuando se encuentren durante todo el año con agua y frecuentemente larvas; y criaderos estacionales, cuando en un periodo determinado del año contengan agua y puedan ser positivos a la presencia de larvas.

La clasificación por tipo de recipiente en cuanto a su descripción específica como tambos, llantas, cubetas, recipientes pequeños o grandes, floreros, etc., facilita el diseño de los trabajos y su evaluación, por lo que debe ser considerada.



De igual manera se clasificarán como recipientes desechables, aquéllos susceptibles de eliminarse mediante una acción de limpieza o descacharrización; como criaderos controlables, aquéllos en los que se puede realizar una acción física para evitar que se infesten o llenen de agua tales como cubrir, perforar, virar boca abajo, proteger de la intemperie, rellenar con tierra, envasar en bolsas o cajas, o destruirlos, y algunos que, en realidad, deben ser tratados con larvicidas; y como criaderos controlados, aquéllos en los que, por su circunstancia, no desarrollarán larvas de Aedes y su objetivo es evaluar el impacto de acciones sobre los recipientes controlables.

La tipología de recipientes criaderos está orientada a que las acciones directas de control realizadas por el personal de salud puedan ser diseñadas y evaluadas de inmediato, cuando se concluyan; así mismo, será de utilidad en los esfuerzos para integrar a la población en programas de Promoción de la Salud y Participación Comunitaria, con lo cual se podrán establecer criterios más adecuados para diseñar, ejecutar y evaluar las actividades.

La presente Norma motivará el desarrollo de las estrategias de Promoción de la Salud, de Comunicación Social y de integración de las autoridades municipales y de educación para que, en el mediano plazo, las acciones de participación ciudadana y comunitaria sean un instrumento alterno a los insecticidas.

Esta Norma establece que la descacharrización debe ser una acción que parta de las autoridades municipales y tenga como objetivo disminuir la basura, incluidos los cacharros. Las autoridades de locales de salud motivarán, apoyarán y evaluarán las descacharrizaciones, pues se ha demostrado que su efecto sobre el control de larvas no es significativo.

El riesgo de transmisión del dengue se valorará de acuerdo con el Grado de Control de Riesgo establecido con base en los índices larvarios del vector, aplicando los siguientes criterios:


GRADO DE CONTROL

DE RIESGO

INDICE DE CASA POSITIVAS

INDICE DE RECIPIENTES POSITIVOS

INDICE DE BRETEAU

Optimo


< 1

< 0.5

1 - 4

Bueno


1 - 4

0.5 - 1.9

5 - 9

Alarma


5 - 9

2 - 4

10 - 14

Emergencia


10 o más

5 o más

15 o más

Para la evaluación entomológica de los vectores del dengue, se establece la siguiente metodología:

 Muestreo de casas sugerido por la OPS, o con base en el cálculo estadístico de muestra representativa de casas.

 Encuesta de casas, para inspeccionar recipientes con larvas.

 Valoración inicial del Indice de Casas Positivas (ICP), la cual se realizará en un lapso no mayor a una semana, previa a la intervención de control antilarvario.

 Tipificación de recipientes positivos, para sugerir acciones específicas.

 Verificación de casas intervenidas con control antilarvario, al día siguiente de la aplicación de medidas.

 Evaluación del impacto sobre el ICP y tipos de recipientes.

 Establecimiento de acciones de capacitación del personal de control antilarvario, inmediato a la evaluación del impacto, y evitar dispendios por bajo impacto sobre las larvas.

 Considerar que las acciones antilarvarias contra los Aedes han sido exitosas, cuando se logren Grados de Control de Riesgo entre el óptimo y el bueno.

 Considerar necesario, si después de la verificación entomológica persisten índices con Grados de Control de Alarma o Emergencia, reiniciar las acciones antilarvarias.

 En el caso del índice de picadura/hora/hombre, existe riesgo de transmisión cuando el valor obtenido sea mayor de uno.

En el caso de los demás vectores, se dispone de manuales específicos que deben ser consultados.

9.14.4 Estudios entomológicos de Lutzomias

Las actividades entomológicas recomendadas para cada Estado, serán según el riesgo de transmisión de Leishmania spp.

Cuando se hayan notificado casos de leishmaniosis, en algunas localidades, y se programen encuestas entomológicas, éstas se efectuarán a lo largo de un año, o en forma permanente con una periodicidad de tres meses, usando los formatos especiales para este fin.

Metodología

Captura con cebo humano: los entomólogos se ubican en lugares protegidos por la vegetación,
a más de 20 m de las viviendas (captura silvestre) donde la población realice alguna actividad, en el peridomicilio (fuera de la casa y a no más de 20 m) o en el interior del domicilio (intradomiciliaria).
Las colectas deben efectuarse poco antes del crepúsculo, hasta al menos las 23 horas, utilizando el tubo de captura (capturador de Castro) o el tubo de cloroformo.

Los ejemplares se depositarán en frascos, por hora de captura, y se preservarán en etanol al 70%.


El material completo y debidamente etiquetado, será enviado al Departamento de Entomología del INDRE, con el formato único de envío de muestras entomológicas y copia del formato de captura.

Captura en sitios de reposo: durante el día, el personal puede realizar la búsqueda de ejemplares en posibles sitios de reposo (raíces y troncos de árboles, huecos entre las rocas, nidos de mamíferos, cuevas, etc.). Los ejemplares se preservarán, igual que en el caso anterior.

Captura con trampas: existe una amplia variedad de trampas (de luz blanca, para el vuelo, pegajosas, con animales, etc.), que podrían utilizarse para la captura de lutzomias adultas, pero la eficacia de éstas varía según la especie en estudio, por lo cual se utilizan como una segunda opción.

Se obtendrán dos indicadores entomológicos:

1. Indice de picadura hora/hombre

IIH = No. de lutzomias capturadas por hora


número de colectores

Se obtiene el promedio de lutzomias por cada hora.

2. Indice de domiciliación

IID = lutzomias capturadas en el interior del domicilio X 100

número total de lutzomias capturadas

IPD = lutzomias capturadas en el peridomicilio X 100
número total de lutzomias capturadas

Se obtiene el porcentaje de individuos asociados a cada ambiente. Estos índices sólo son comparables entre sí, de haberse realizado todos los estudios en una misma localidad, con el grado de domiciliación de las especies (previamente identificadas), lo que puede ser la base para el tipo de intervención antivectorial a emplear.

Con estudios periódicos (3 o 4 al año) y sistemáticos, como se ha indicado, es posible graficar la distribución de horario de la actividad hematófaga y la densidad poblacional relativa por especie, en el año, lo que permite desarrollar métodos de protección individual de la población y establecer las épocas del año en las que se debe reforzar la búsqueda de casos de leishmaniosis y la prevención de picaduras de lutzomias.



9.14.5 Estudios entomológicos de triatominos

Encuestas entomológicas

La unidad entomológica pedirá a los habitantes de la vivienda de la que procedan los casos que capturen y depositen las chinches vivas en un frasco, o en una bolsa de polietileno, previa instrucción en cuanto a su reconocimiento (diferenciación respecto a otros artrópodos comunes en la vivienda) y de su actividad nocturna. El material así obtenido será etiquetado por el personal de salud, se utilizará el predio como unidad según el formato de colecta. Posteriormente, el material se identificará taxonómicamente por especie,
y se estudiarán las heces parasitoscópicamente. El 100% de las muestras positivas a Trypanosoma cruzi y el 10% de las negativas, deberán enviarse al Departamento de Entomología del INDRE para control de calidad y seguimiento del Programa. En caso de que no haya posibilidad de realizar estos estudios en el Estado, los hará el citado Departamento.

El estudio de encuesta entomológica deriva o procede del estudio epidemiológico de casos, de brotes epidémicos, o de vigilancia rutinaria del personal de entomología, y deberá efectuarse de la siguiente manera:

 Determinación del tamaño de la muestra, utilizando la vivienda como unidad, aleatoriamente y de manera paralela a la encuesta epidemiológica; de igual manera, si los poblados son pequeños, se hará muestreo en toda la localidad.

 Inspección activa de las viviendas: cada entomólogo buscará chinches en cualquier estadio de desarrollo (huevos, ninfas y adultos), de ambos sexos, o evidencias de su presencia (manchas típicas, producidas por sus heces), en posibles refugios a nivel del piso, paredes y techo, en el interior de la casa, con énfasis en los dormitorios, así como en el área peridoméstica (materiales de construcción apilados, leña, corrales, gallineros, hendiduras de paredes, etc.), al menos durante una hora. Se recomienda usar soluciones comerciales de insecticidas cuyo ingrediente activo sean piretrinas o piretroides, a concentración baja, ya que al aplicarlos en los posibles refugios provocan irritación, obligando a las chinches a salir y poder entonces capturarlas. Es importante usar pinzas largas y evitar tomarlas directamente con las manos. El material recolectado se guarda en frascos y se etiqueta, llenando el formato de encuesta entomológica.

El material se procesa, como se mencionó anteriormente, se hace la identificación de los triatominos, se cuentan por grupos (huevos; estadio ninfales I – III; IV – V; hembra o macho adultos) y se realiza el estudio parasitoscópico de heces.

 Se determinan los indicadores entomológicos recomendados por OPS/OMS:

INDICE DE INFESTACION

Expresa el porcentaje de viviendas con triatominos



No. de casas con triatominos X 100

No. total de casas estudiadas

INDICE DE DENSIDAD

No. total de triatominos capturados

No. total de casas

En este índice el resultado no se multiplica por 100, ya que no expresa porcentaje, sino el promedio de chinches por casa, detectadas en la muestra.

INDICE DE HACINAMIENTO



No. total de triatominos capturados

No. de casas con triatominos


Al igual que el índice anterior, tampoco se multiplica por 100. El resultado expresa el promedio de chinches que se encuentran en cada casa; esto es, indica qué tan poblada por chinches se encuentra cada casa.



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